中国当代儿科杂志  2014, Vol. 16 Issue (1): 1118-1121   PDF    
不同胎龄新生儿细胞和体液免疫功能检测
李燕, 韦秋芬, 潘新年 , 蒙丹华, 刘先知, 许靖, 韦玮    
广西壮族自治区妇幼保健院新生儿科, 广西 南宁 530003
摘要目的 了解不同胎龄新生儿的免疫功能特点.方法 2012 年6 月1 日至2013 年6 月1 日收治的115 例无感染早产儿,根据出生时胎龄分为早期早产儿组(28~33+6 周,n=57)和晚期早产儿组(34~36+6 周,n=58);同期选取88 例健康足月儿(37~41+6 周)为对照.于出生后24 h 内采集各组静脉血,采用流式细胞仪检测各组淋巴细胞亚群CD3+、CD4+、CD8+、CD19+ 和NK 细胞,并根据血常规结果计算各淋巴细胞亚群含量;采用免疫比浊法检测各组血清IgG、IgA 和IgM 含量.结果 早期和晚期早产儿组CD3+、CD4+ 百分比及CD4+/CD8+ 比值均高于足月儿组(P<0.05),而CD8+、CD19+ 和NK 细胞百分比均低于足月儿组(均P<0.05);早期和晚期早产儿组总淋巴细胞、CD3+、CD4+、CD8+、CD19+ 和NK 细胞含量均低于足月儿组(P<0.05),且上述指标在晚期早产儿组的水平均高于早期早产儿组(P<0.05);早期和晚期早产儿组血清IgG 水平低于足月儿组(P<0.05),而IgA、IgM 含量在3 组间差异无统计学意义(P>0.05).结论 新生儿胎龄影响其细胞免疫及体液免疫功能;随胎龄增长,新生儿免疫功能将逐渐完善.
关键词免疫功能     早期早产儿     晚期早产儿     足月儿    
Cellular and humoral immunity in preterm infants of different gestational ages
LI Yan, WEI Qiu-Fen, PAN Xin-Nian , MENG Dan-Hua, LIU Xian-Zhi, XU Jing, WEI Wei    
Department of Neonatology, Guangxi Women and Children's Health Hospital, Nanning 530003, China
Abstract: Objective To investigate the characteristics of immune function in newborn infants of different gestational ages. Methods A total of 115 premature infants free of infection between June 1, 2012 and June 1, 2013 were divided into two groups according to their gestational age at birth:early preterm infant group (28-33+6 weeks,n=57) and late preterm infant group (34-36+6 weeks, n=58). Meanwhile, 88 full-term infants (37-41+6 week) wererecruited to the control group. Venous blood samples were collected within 24 hours after birth. The percentages oflymphocyte subsets, such as CD3+, CD4+, CD8+, and CD19+ T cells and natural killer (NK) cells were measured by flow cytometry, and the absolute count of each population was calculated using the results from routine blood work.Concentrations of serum IgG, IgA, and IgM were measured by immunoturbidimetry. Results Both preterm infantgroups had significantly higher percentages of CD3+ and CD4+ T cells and CD4+/CD8+ ratio (P<0.05) and significantlylower percentages of CD8+ and CD19+ T cells and NK cells (P<0.05), as compared with the full-term infant group. Theabsolute counts of total lymphocytes, CD3+, CD4+, CD8+, and CD19+ T cells, and NK cells in both preterm infant groupswere significantly lower than those in the full-term infant group (P<0.05), and the above parameters in the late preterminfant group were significantly higher than those in the early preterm infant group (P<0.05). Both preterm infant groups showed significantly lower concentrations of serum IgG than the full-term infant group (P<0.05), while no significant differences in concentrations of serum IgA and IgM were observed between the three groups (P>0.05). Conclusions Neonatal gestational age has an effect on cellular and humoral immunity. The immune function gradually improves with increasing gestational age.
Key words: Immune function     Early preterm infant     Late preterm infant     Full-term infant    

免疫系统的发育始于胎儿早期,出生时尚未 发育成熟,因此,新生儿免疫系统功能与年长儿 或成人比有显著差异,即使在不同胎龄新生儿中, 相比足月儿,早产儿T、B 淋巴细胞功能更不成熟, 更易受病原体侵袭,且感染更严重,病程更长[1]。 胎儿在孕期的最后3 个月可能是细胞免疫功能成 熟的关键时期,胸腺发育增快、胸腺细胞迅速增 加,T 细胞总数和各亚群细胞数量增长迅速,功能 逐渐完善。而早产儿,尤其是胎龄越小的早产儿, 胸腺发育不成熟,胸腺内分泌功能不完善,导致T 细胞总数和各亚群细胞数量减少及功能低下,引 起细胞免疫功能低下;且早产儿亦因过早娩出, 未能从母体摄入足够的IgG,故IgG 水平低下。晚 期早产儿又称近足月儿,是指胎龄在34~36+6 周出 生的婴儿,由于晚期早产儿比早期早产儿在体格 大小和成熟度方面更接近足月儿,常被认为与足 月儿无差异而被忽视,尽管晚期早产儿曾被称为 “近足月儿”,但其免疫功能的发育不成熟,发 生感染的几率高,导致疾病发生、疾病负担甚至 死亡的风险增加,值得更多、更深入地关注。本 研究采用横断面调查的研究方法,对我院2012 年 6 月至2013 年6 月新生儿科收治的适于胎龄儿及 产科出生的健康足月儿共203 例的免疫功能进行 检测,以探讨不同胎龄新生儿的免疫功能特点。 1 资料与方法 1.1 研究对象

选取2012 年6 月1 日至2013 年6 月1 日于 我院新生儿科住院的生后24 h 内的早产儿115 例 及我院产科出生的健康足月儿88 例为研究对象。 根据胎龄将早产儿分为早期早产儿组(n=57), 其中男30 例,女27 例,胎龄28~33+6 周,平均 体重1 772±288 g;晚期早产儿组(n=58),其中 男29 例,女29 例,胎龄34~36+6 周,平均体重 2 147±317 g。足月儿组男46 例,女42 例,胎龄 37~41+6 周,平均体重3 154±427 g。3 组间孕母年龄比较差异无统计学意义(P>0.05)。

剔除标准:(1)有窒息或抢救病史;(2)存 在血常规明显异常的感染者(WBC ≥ 20×109 或 WBC ≤ 7×109;PLT<150×109;CRP>10 mg/L); (3)母亲有自身免疫性疾病等影响免疫功能的病 史或母亲服用免疫制剂;(4)母亲分娩前有感染史; (5)应用免疫调节剂的患儿;(6)患先天性免 疫缺陷病的患儿。 1.2 方法

所有研究对象均于生后24 h 内采集空腹静 脉血4 mL,分两管,一管用肝素抗凝处理,于采 血后30 min 内采用美国BECKMAN 公司生产的 CDUCTER Epics XL 流式细胞仪检测T 细胞亚群 CD3+、CD4+、CD8+、CD19+ 及NK 细胞;另一管分 离血清,采用美国BECKMAN 公司生产的Au2700 全自动生化仪进行IgG、IgA、IgM 检测。 1.3 统计学分析

采用SPSS 17.0 统计软件包对数据进行统计 学分析,计量资料采用均数± 标准差(x±s)表 示,多组间比较采用方差分析,组间两两比较使 用LSD-t 检验,P<0.05 为差异有统计学意义。 2 结果

早期和晚期早产儿组CD3+、CD4+ 百分比 和CD4+/CD8+ 比值均高于足月儿组(P<0.05), CD8+、CD19+ 和NK 细胞百分比均低于足月儿组 (P<0.05); 而CD3+、CD4+、CD8+、CD19+、NK 细胞百分比和CD4+/CD8+ 比值在早期和晚期早产 儿间比较差异均无统计学意义(P>0.05)。早期和 晚期早产儿组总淋巴细胞、CD3+、CD4+、CD8+、 CD19+ 和NK 细胞含量均低于足月儿组(P<0.05), 且上述指标在晚期早产儿组的水平均高于早期早 产儿组(P<0.05)。早期和晚期早产儿组血清IgG 水平比较差异无统计学意义(P>0.05),但均低于 足月儿组(P<0.05),3 组间IgA、IgM 含量差异 均无统计学意义(P>0.05)。见表 1~3。

表 1 3 组新生儿淋巴细胞亚群分布比较
表 2 3 组新生儿淋巴细胞亚群含量比较
表 3 3 组新生儿血清免疫球蛋白含量比较
3 讨论

人体免疫系统的发生发育开始于胚胎早期, 出生时尚未完全发育成熟。新生儿免疫系统的不 成熟是把双刃剑:一方面具有保护性作用,某种 程度上可以防止早产;另一方面,免疫系统的不 成熟导致了微生物入侵的易感性,造成了已发生 败血症的新生儿临床症状不明[2]。T 淋巴细胞是体 内重要的免疫调节和效应细胞。根据其功能的差 异可分为许多亚型,其中与临床和基础关系较大 的是辅助/ 诱导性T 细胞(CD4+)及抑制/ 杀伤性 T 细胞(CD8+)。在正常的机体内,这两个淋巴 细胞亚群之间相互作用,保持一定的平衡并维持 着机体的正常免疫功能,如出现T 淋巴细胞总数 不足或亚群失衡,往往导致广泛的免疫系统功能 紊乱,增加机体对病原体的易感性。CD4+ T 细胞 和CD8+ T 细胞在免疫应答中起着十分重要的调节 作用,若CD4+ T 细胞功能低下机体易发生感染, CD8+ T 细胞功能亢进则发生免疫抑制。CD19+ 是B淋巴细胞膜上的特征标志,B 细胞一方面可作为抗 原提呈细胞(antigen presenting cells,APC 细胞)加 工处理变应原而活化T 细胞,另一方面可接受其 他APC 细胞提呈的抗原的刺激而活化。新生儿B 细胞多为不成熟B 细胞,活化后其Ig 类别转换、 抗体亲和力成熟、记忆性B 细胞形成的能力较弱[3]。 由于新生儿体内缺乏特异性抗体,故母体的特异 性抗体对其抗感染免疫非常重要,但母体的Ig 中 只有IgG 能通过胎盘,且是在孕期最后3 个月才 能大量由母体胎盘进入胎儿体内,早产儿由于过 早娩出未能从母体摄入足够IgG。NK 细胞属非特 异性免疫细胞,它们无需抗原预先致敏,就可以 直接杀伤某些肿瘤和病毒感染的靶细胞,因此在 机体早期抗病毒或胞内寄生菌感染的免疫过程中 起重要作用[4]。早产儿由于自身固有免疫和获得免 疫均不成熟,使其比足月儿更容易受病原体侵害, 感染更严重,病程更长[5]

在早产分娩中,75% 为34~36+6 周的早产儿, 这类早产儿被称为晚期早产儿又称“近足月儿”[6], 由于其比早期早产儿在体格大小和成熟度方面更 接近足月儿,以往认为这部分新生儿器官发育相 对成熟,常被认为与足月儿无差异而被忽视[7],但 相对于足月儿,其患病率、新生儿期再入院率及 病死率均较高[8],早产儿易发生败血症[9],晚期早 产儿发生败血症的概率是足月儿的3 倍(36.7% vs 12.6%)[10, 11]。晚期早产儿感染后的症状和体征常 很轻微或非特异性,而其他疾病(如:喂养困难、黄疸、低血糖、低体温和呼吸困难等)均可成为 感染的表现,病情也更易迅速加重或恶化[12]。在 本组研究中,早期早产儿、晚期早产儿的淋巴细 胞亚群、IgG 结果比较均较足月新生儿低,提示晚 期早产儿的T 细胞、B 细胞及NK 细胞免疫功能均 较足月儿低下。故在对晚期早产儿的护理治疗中 预防感染,增强抵抗力亦非常重要,所以晚期早 产儿也应同早期早产儿一样引起广大儿科医师的 关注。

参考文献
[1] 邵晓梅, 叶鸿瑁, 丘小汕. 实用新生儿学[M]. 第4 版. 北京:人民卫生出版社, 2011:841-846.
[2] Stoll BJ, Hansen NI, Higgins RD, et al. Very low birth weight preterm infants with early onset neonatal sepsis:the predominance of gram-negative infections continues in the National Institute of Child Health and Human Development Neonatal Research Network, 2002-2003[J]. Pediatr Infect Dis J, 2005, 24(7):635-639.
[3] 张融, 王琼瑾, 徐金梅, 等. 新生儿外周血B 淋巴细胞CD21 表达的免疫学意义[J]. 中国当代儿科杂志, 2007, 6(9):546-548.
[4] 金伯泉, 曹雪涛, 熊思东. 医学免疫学[M]. 第6 版. 北京:人 民卫生出版社, 2013, 128.
[5] Melville JM, Moss TJ. The immune consequences of preterm birth[J]. Front Neurosci, 2013, 7(9):79.
[6] Raju TN, Higgins RD, Stark AR, et al. Optimizing care and outcome for late-preterm (near-term) infants:a summary of the workshop sponsored by the National Institute of Child Health and Human Development[J]. Pediatrics, 2006, 118(3):1207-1214.
[7] Spong CY, Mercer BM, D'Alton M, et al. Timing of indicated late-preterm and early-term birth[J]. Obstet Gynecol, 2011, 118(2):323-333.
[8] Mathews TJ, MacDorman MF. Infant mortality statistics from the 2006 period linked birth/infant death data set[J]. Natl Vital Stat Rep, 2010, 58(17):1-31.
[9] Soraisham AS, Singhal N, McMillan DD, et al. A multicenter study on the clinical outcome of chorioamnionitis in preterm infants[J]. Am J Obstet Gynecol, 2009, 200(4):e371-e376.
[10] Kalyoncu O, Aygun C, Cetinoglu E, et al. Neonatal morbidity and mortality of late-preterm babies[J]. J Matern Fetal Neonatal Med, 2010, 23(7):607-612.
[11] Engle WA, Tomashek KM, Wallman C. "Late-preterm" infants:a population at risk[J]. Pediatrics, 2007, 120(6):1390-1401.
[12] Adams-Chapman I. Long-term impact of infection on the preterm neonate[J]. Semin Perinatol, 2012, 36(6):462-470.