急性白血病(acute leukemia,AL)是儿童最常 见的恶性肿瘤,分为急性淋巴细胞性白血病(acute lymphoblastic leukemia,ALL)和急性髓细胞性白血 病(acute myeloid leukemia,AML),其 中 以 ALL 最常见,占儿童白血病总体的 75% 左右。最近十 几年来 ALL 5 年生存率从 83.7% 升高至 90.4%[1], AML 也升高至 70% 左右 [2]。尽管儿童急性白血病 总体治愈率有所提高,但仍有近 10%~30% 的患儿 未能得到治愈,尽管加大化疗药物剂量可以提高 一定治愈率,但随之而来的药物毒性及不良反应 也大大增加 [3]。研究这部分患儿的生物学特性,对 急性白血病的治疗、疗效评估及预后改善具有重 要意义。环境因素和遗传因素在急性白血病发病 中起重要作用 [4],其中遗传因素涉及染色体核型异常和分子水平异常。既往对白血病的染色体核 型的研究很多,比如经典的细胞染色体核型异常 t (12;21)/TEL-AML1、11q23/MLL-AF4、t(8;21) /AML1-ETO 等对 ALL 或 AML 的预后精确评估及 治疗至关重要 [5, 6]。近年来关于急性白血病的分子 水平研究也成为研究的热点,目前已证实一些分 子异常及相关信号通路失调与急性白血病的发病、 治疗及预后有关 [5, 7, 8]。
JAK-STAT 信 号 通 路(Janus kinase-signal transducers and activators of transcription pathway)调 控细胞的增殖、分化、凋亡等重要的生物学过程, 通路异常与人类多种肿瘤尤其是造血系统肿瘤的 形成有关。JAK2 是通路中的重要一员,通过 JAKSTAT 信号通路介导Ⅰ型细胞因子的胞内信号转 导,JAKs 突变可导致 JAK/STAT 通路的异常活化, 与血液系统肿瘤的发生密切相关。如 JAK2V617F 突变是骨髓增殖性疾病中最常见的突变,近年来 在急性髓细胞及淋巴细胞白血病中,也都已发现 JAK2 基因突变,JAK2 某些位点突变可能与急性 白血病的发生、治疗及预后密切相关。鉴于 JAK2 在血液肿瘤中的重要作用,目前已研制出 JAK2 突 变靶向抑制剂,一些抑制剂已进入临床试验。本 文就 JAK2 基因突变在急性白血病中的研究进展作 一综述。 1 JAK2 及 JAK-STAT 信号通路 1.1 JAK2 基因的结构与功能
Janus kinases(JAKs) 蛋 白 家 族 是 一 类 非 受 体型酪氨酸激酶,迄今已发现 4 个成员:分别为 JAK1、JAK2、JAK3、TYK2[9]。JAK1、JAK2 与 TYK2 在多种组织中广泛表达,而 JAK3 仅在血液、 血管平滑肌及内皮细胞中表达 [10]。JAK2 基因位于 9 号染色体短臂 2 区 4 带,JAK2 由 7 个 JAK 同源 结构域(JAK homology domain,JH)组成,从羧基 端至氨基端依次为 JH1-JH7。JH1 位于羧基端,为 具有酪氨酸激酶活性的主要催化结构域,JH2 为 假激酶结构域,起到调节 JH1 激酶活性的作用。 最新研究表明,JH2 可磷酸化 JAK2 中 2 个负性调 节位点丝氨酸 523 及酪氨酸 570,JH2 催化活性 的失活会使 JAK2 基础活性增加及下游信号转导 增 强 [11]。JH3 与 JH4 相 邻,是 类 SH2 结 构 域。JH5-JH7 位于氨基端,称为 FERM 区域,是与多种 细胞因子受体相结合的部位,介导 JAK2 与细胞因 子受体之间的联系 [12]。
JAK2 通 过 JAK-STAT 信 号 通 路 介 导 Ⅰ 型 细 胞 因 子 的 胞 内 信 号 转 导,包 括 促 红 细 胞 生 成 素(erythropoietin,EPO)、 血 小 板 生 成 素 (thrombopoietin,TPO)、粒细胞巨噬细胞集落刺 激 因 子(granulocyte-macrophage colony stimulating factor,GM-CSF)、 干 细 胞 因 子(stemcell factor, SCF)、 生 长 激 素、IFN-γ、TNF-α、IL-6、IL-10 等多种细胞因子 [13, 14, 15],参与调控细胞的增殖、分化、 凋亡及免疫调节等重要的生物学过程,与血液系 统细胞的发育及一些血液系统疾病的发生密切相 关。 1.2 JAK-STAT 信号转导
JAK-STAT 信号通路是多细胞生物体内最具特 征性的分子信号转导通路之一,能介导 50 种以上 的生长因子及细胞因子转导通路。STAT 家族即信 号转导子和转录激活子,由 7 个成员组成,分别 为 STAT1、STAT2、STAT3、STAT4、STAT5A、 STAT5B、STAT6,STATs 在 JAK-STAT 信 号 转 导 及转录激活中起着关键作用。当细胞因子等配体 与受体结合之后,受体亚单位发生同源或异源二 聚化,使与受体耦联的 JAKs 靠近,JAKs 发生自 身磷酸化成为活化状态,活化的 JAKs 募集下游的 STAT 蛋白分子,并催化 STAT 磷酸化,使 STAT 活化形成二聚体,进入细胞核,选择性地与核内 靶基因上相应的转录元件结合,调控 MYC、cyclin D1、survivin、BCL2 等靶基因的转录,从而调控细 胞的增殖、分化、迁移、凋亡、存活及免疫等生 物过程 [16]。
在正常情况下,JAK-STAT 通路的活化受到严 格的调控,在细胞因子等配体与受体结合后激活 该通路的信号转导。JAKs 突变可导致不依赖于配 体的 JAKs 的组成性活化,导致 JAK/STAT 的异常 活化,该通路的异常激活可导致细胞持续增殖及 凋亡减少,与一些肿瘤尤其是血液系统肿瘤的发 生密切相关 [9]。
JAK2 作为 JAK-STAT 通路中的重要一员在生 物体内各组织中广泛表达,在正常血液系统发育 及血液系统肿瘤发生中起重要作用。JAK2 与细胞 因子受体胞内段近膜区保守的 BOX1 和 BOX2 区相互作用,能够特异地介导细胞因子的胞内信号 转导。近来 Dawson 等 [17] 研究表明,除了依赖于 STAT 的信号转导,活化的 JAK2 还可以直接进入 细胞核内磷酸化组蛋白 H3,使异染色质蛋白 1α (heterochromatin protein 1 alpha,HP1α)与磷酸化 的组蛋白 H3 亲和力降低,HP1α 从异染色质上解 离,导致 Lmo2 等原癌基因的表达上调,此 JAK2- H3-HP1α 信号通路在白血病等血液系统肿瘤的发 生中起重要作用。目前很多研究已证实 JAK2 突变 可导致许多血液系统疾病,如白血病、淋巴瘤、 慢性骨髓增殖性肿瘤等 [18, 19, 20]。 2 JAK2 基因突变与急性白血病的发生
研 究 表 明,在 AML 及 ALL 中,都 已 发 现 JAK2 基因突变。JAK2 突变多发生在 JH2 结构域, 这些突变总的效应是 JH2 结构发生异常,抑制作 用消失,从而 JH1 过度磷酸化,引起 JAK2 持续活 化,导致下游转导信号异常激活 [11],从而导致细 胞过度增殖、凋亡分化受阻。 2.1 JAK2 突变与 AML
AML 是 一 种 造 血 干 细 胞 的 恶 性 克 隆 性 疾 病。AML 可由髓系细胞分化发育过程中造血干 细胞或造血祖细胞恶性转化而来,也可继发于化 疗、放疗或由其他疾病如骨髓增生异常综合征 (myelodysplastic syndrome,MDS)、骨髓增殖性肿 瘤(myeloproliferative neoplasm,MPN)演变而来, 继发性 AML 在分子遗传特性上与原发性 AML 不 同且临床预后较差 [21]。在 AML 中有很大一部分病 例发生基因突变从而导致了相应信号转导通路的 异常,在原发性 AML 中,FLT3、NPM1、DNMT3α 等 是 常 见 的 突 变 [22],而 在 继 发 于 MPNs 的 AML 中,JAK2、TENT、IDH1/2、ASXL1 等突变常见, JAK2-STAT 信号通路异常活化在 AML 发生中有重 要作用 [23]。
大量研究发现 JAK2V617F 为 MPNs 的高突变 位点,约 76% 的真性红细胞增多症(polycythemia vera,PV)及 60% 的特发性血小板增多症(essential thrombocythemia,ET)和 37.5% 特发性骨髓纤维化 (primary myelofibrosis,PMF)患者存在 JAK2V617F 突变,发生率显著高于普通人群,与 MPNs 发病 密切相关 [24, 25]。JAK2V617F 突变位于 JAK2 基因第1 849 位,原来的碱基由鸟嘌呤 G 突变为胸腺嘧啶 T, 第 617 位的缬氨酸变为苯丙氨酸,导致 JH2 结构 不稳定,抑制 JH1 自身磷酸化的功能减弱,引起 JAK2 持续活化 [13],导致细胞持续增殖、凋亡减少。 MPNs 可以转化为 AML,继发于 MPNs 的 AML 中 JAK2V617F 突变阳性率约为 40%~50%[26],而原发 性的 AML 中 JAK2V617F 突变阳性率仅为 2.7%[27]。 目前 MPNs 转化为 AML 的发生机制还不十分清楚, 可 能 至 少 涉 及 两 条 通 路。 第 一 条 为 JAK2V617F 阳 性 的 MPNs 转 化 为 JAK2V617F 阳 性 的 AML 通 路,这条通路上有新的获得性基因突变,如癌 蛋白 53[28]、精氨酸 / 丝氨酸丰富剪接因子 2 基因 (SRSF2)突变 [23] 等,与 JAK2V617F 突变共同参 与转化过程。另一条为 JAK2V617F 阳性的 MPNs 转化为 JAK2V617F 阴性的 AML 通路,研究发现 JAK2V617F 阳性的 MPNs 与继发性 JAK2V617F 阴 性的 AML 存在克隆联系,但二者是否由同一祖系 分化而来尚未研究清楚 [29]。在 AML 中还发现了其 他突变,如 JAK2K607N 突变 [27] 等。
JAK2 突变与 AML 的预后有关。有研究表明 JAK2V617F 突变在 t(8;21)AML 发生中起重要作 用,且与 t(8;21)AML 不良预后密切相关 [30]。另 一项研究表明在 AML 中,JAK2 高水平磷酸化与 化疗敏感性差、预后不佳相关 [31]。 2.2 JAK2 突变与 ALL
JAK2 突变在 ALL 发生中起重要作用。Kratz 等 [32] 在一位 3 岁的前 B-ALL 患者骨髓 DNA 中发 现了 L611S 突变。研究发现在 BaF3 细胞内 L611S 突变导致 JAK2 异常激活,从而产生抗凋亡蛋白, 导致肿瘤发生,JAK2 激酶异常激活的分子机制尚 不清楚,推测与 JAK2V617F 突变的机制类似 [33]。 Li 等 [34] 和 Wu 等 [35] 研究表明,R683G(S)突变 与 B-ALL 的发病有关,且在同一年的研究发现 R683 引 起 B-ALL 发 病 的 机 制 为 R683 与 E627 相 互作用能够维持 JH2 的紧凑结构,从而使 JH1 处 于未激活状态。若 683 位点的精氨酸被丝氨酸或 甘氨酸替代,或者 627 位点的谷氨酸被丙氨酸替 代,突变后的氨基酸组成的蛋白不能维持 JH2 正 常的二级、三级结构紧凑,破坏 JH1/JH2 之间的 联系,使 JH1 处于激活状态。R683G(S)突变可 导致 JH1 持续激活,激活下游的 STAT5,进而可 导致 Ba/F3 细胞在没有生长因子的环境中持续过度增殖,从而导致 B-ALL。
JAK2 突 变 与 ALL 预 后 密 切 相 关。Mullighan 等 [36] 对 187 位 BCR-ABL1 阴 性 的 高 危 ALL 患 儿 DNA 检测发现,其中 16 位患儿(占 8.6%)具有 JAK2 突变,这些突变包括 R683G(S)、I682F、 QGinsR683、R687Q、D873N、P933R,研 究 提 示 这 些 JAK2 突 变 与 高 危 ALL 的 预 后 较 差 相 关。 Chen 等 [37] 对 JAK2 基 因 外 显 子 16、20、21 突 变 检测提示 JAK2 突变与 ALL 预后差有关,尤其是 和高危 ALL 预后差有高度相关性,且这些突变与 高危 ALL 的较高复发率有关,但与标危 ALL 的复 发率无关。但 Buitenkamp 等 [38] 的研究发现 JAK2 突变与唐氏 ALL 危险度分级无明显相关性。以上 研究提示 JAK2 突变与急性白血病尤其是高危 ALL 预后差有关,因此 JAK2 激酶抑制剂靶向治疗可能 成为治疗急性白血病的有效策略。 2.3 JAK2 基因多态性与急性白血病
还有研究表明 JAK2 基因多态性与急性白血 病 的 发 病 也 有 关 系。 研 究 发 现 32 个 JAK2 多 态 性与血液系统疾病或增殖性肿瘤发病有关,其中 K607N(Exon14)、L611S(Exon14)、V617F(Exon14)、 I682F(Exon16)、I682AQG(Exon16)、R683G (Exon16)等几个多态性与急性白血病有关 [39]。 Zhong 等 [40] 对 260 位 急 性 白 血 病 患 者 和 280 位 健 康 对 照 者 采 用 MALDI-TOF 法 对 DNA 进 行 检 测发现 rs2230724 与急性白血病的易感性有关, rs56118985 也可能与急性白血病易感性有关,而 rs55953208、rs2230727、rs2230728 与急性白血病 易 感 性 无 关。Nahajevszky 等 [41] 对 176 位 AML 患 者研究发现 rs12343867 与 AML 的易感性有关。 3 JAK2 突变与急性白血病靶向治疗
鉴于 JAK2 在急性白血病发病及预后中的重 要意义,关于 JAK2 突变靶向治疗的研究也越来越 多。这些研究提示 JAK2 激酶的靶向治疗抑制剂对 血液系统疾病有显著疗效,部分靶向治疗抑制剂 已进入临床实验研究 [42, 43, 44, 45]。Weisberg 等 [46] 研究发 现单独应用 FLT3 抑制剂 dasatinib 治疗 FLT-3 突变 阳性的 AML 时只能诱导外周血异常细胞凋亡,对 骨髓基质中的异常细胞无作用,如果与 JAK2 突变 抑制剂 PKC412 协同可以显著增加细胞毒性,作用于骨髓基质细胞,提高疗效。Levis 等 [43] 的研究也 发现 CEP-701 可以作用于 FLT3 位点,在 AML 患 者的二期临床试验具有一定疗效,但并不能够延 长患者的生存期。Hart 等 [47] 的研究表明 pacritinib (SB1518)能够通过抑制 JAK2 突变来诱导细胞 凋亡、抑制细胞周期及细胞增殖,从而治疗淋系 和髓系恶性肿瘤。Novotny-Diermayr 等 [48] 开展的 AML 临床前期模型研究发现,组蛋白脱乙酰酶抑 制剂 pracinostat(SB939)和 JAK2 抑制剂 pacritinib 能够协同作用减少 JAK 通路激活、抑制肿瘤生长 及转移。
鲁索利替尼(ruxolitinib)是第一个通过美国 FDA 认证的用于治疗血液系统肿瘤的 JAK2 抑制剂 类药物,已进入四期临床试验,用于患者治疗, 能够减轻疾病相关的症状,提高患者的生存质 量 [49, 50]。但目前发现的 JAK2 抑制剂大多处于一期 或二期临床试验,进入三期临床试验尚需一定时 间。原因在于 JAK2 突变抑制剂有其优点,也有其 不足之处,虽然使用抑制剂能提高急性白血病患 者治愈率,但是目前发现的抑制剂特异性较低, 在抑制 JAK2 突变的同时对其他 JAKs 也有抑制作 用,导致一些不良反应,如血小板减少、反复贫血、 呕吐或腹泻等 [44, 51, 52],因此需要进一步寻找特异性 较 高 的 抑 制 剂。Shide 等 [53] 在 Ba/F3-JAK2V617F 细胞中研究发现 R723 的化学和晶体结构能够和 JAK2 的激酶催化区结合,抑制 JAK2/STAT5 通路 活化,R723 对 JAK2 的抑制作用具有较高的特异 性,是对 JAK3 抑制的 13 倍、对 JAK1 和 Tyk2 的 几百倍。Cook 等 [54] 对 AML 患者的外周血或骨髓 标 本 分 析 证 明,JAK1/2 突 变 抑 制 剂 AZD1480 为 ATP 竞争性抑制剂,能够区分出正常的造血干细 胞,选择性地靶向攻击异常的 AML 细胞,从而诱 导 AMLCD34+38- 及 CD34+38+ 细胞凋亡,减少集落 细胞形成,但是 AZD1480 目前只应用在动物模型 中。以上研究表明,JAK2 抑制剂可改善急性白血 病的预后,在急性白血病的靶向治疗中有非常好 的临床应用前景。 4 总结与展望
综上所述,JAK2 突变使 JAK2-STAT 信号通 路持续活化,参与了急性白血病的发生发展,但具体的分子机制仍不十分清楚。JAK2 突变是持续 激活 STATs 的经典通路,此外,还有其他分子异 常,如表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor,EGFR) 突 变,也 可 持 续 激 活 STATs, 参 与 急 性 白 血 病 的 发 生 发 展 [55],且 EGFR 抑 制 剂 gefitinib 已应用于 AML 的治疗性研究 [56, 57]。对 JAK2 抑制剂的研究为进一步揭示 JAK2 在急性白 血病中的作用和机制提供了线索,JAK2 抑制剂靶 向治疗是治疗 JAK2 突变的急性白血病的有效策 略,临床前及临床研究已表明 JAK2 抑制剂对这类 疾病的治疗有显著疗效,JAK2 抑制剂的研发对进 一步提高急性白血病的治愈率具有重要意义。但 目前多数 JAK2 抑制剂尚未进入临床治疗,且一些 抑制剂的不良反应较多,因此找到特异性强、不 良反应少的 JAK2 抑制剂是亟待解决的问题,对提 高急性白血病的疗效和改善预后具有重要意义。
[1] | Hunger SP, Lu X, Devidas M, et al. Improved survival for children and adolescents with acute lymphoblastic leukemia between 1990 and 2005:a report from the children's oncology group[J]. J Clin Oncol, 2012, 30(14):1663-1669. |
[2] | Zhai XW, Cheng FW, Lee V, et al. Improved survival outcome of childhood acute myeloid leukemia with intensified chemotherapy in Chinese children[J]. Pediatr Hematol Oncol, 2011, 28(4):269-278. |
[3] | 陈波, 宪莹, 苏庸春, 等. CCLG-ALL08 方案治疗儿童急性淋 巴细胞白血病毒副作用的临床研究[J]. 中国当代儿科杂志, 2013, 15(9):737-742. |
[4] | Eden T. Aetiology of childhood leukaemia[J]. Cancer Treat Rev, 2010, 36(4):286-297. |
[5] | Pui CH, Carroll WL, Meshinchi S, et al. Biology, risk stratification, and therapy of pediatric acute leukemias:an update[J]. J Clin Oncol, 2011, 29(5):551-565. |
[6] | 竺晓凡. 如何提高儿童急性髓系白血病的疗效[J]. 中国当代 儿科杂志, 2014, 16(2):108-110. |
[7] | Offenmuller S, Ravindranath Y, Goyette G, et al. Focused screening of a panel of cancer-related genetic polymorphisms reveals new susceptibility loci for pediatric acute lymphoblastic leukemia[J]. Pediatr Blood Cancer, 2014, 61(8):1411-1415. |
[8] | Gutierrez-Camino A, Lopez-Lopez E, Martin-Guerrero I, et al. Intron 3 of the ARID5B gene:a hot spot for acute lymphoblastic leukemia susceptibility[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2013, 139(11):1879-1886. |
[9] | Seavey MM, Dobrzanski P. The many faces of Janus kinase[J]. Biochem Pharmacol, 2012, 83(9):1136-1145. |
[10] | Lai SY, Johnson FM. Defining the role of the JAK-STAT pathway in head and neck and thoracic malignancies:Implications for future therapeutic approaches[J]. Drug Resistance Updates, 2010, 13(3):67-78. |
[11] | Ungureanu D, Wu J, Pekkala T, et al. The pseudokinase domain of JAK2 is a dual-specificity protein kinase that negatively regulates cytokine signaling[J]. Nature Struct Mol Biol, 2011, 18(9):971-976. |
[12] | Lee HJ, Daver N, Kantarjian HM, et al. The role of JAK pathway dysregulation in the pathogenesis and treatment of acute myeloid leukemia[J]. Clin Cancer Res, 2013,9(2):27-335. |
[13] | Silvennoinen O, Ungureanu D, Niranjan Y, et al. New insights into the structure and function of the pseudokinase domain in JAK2[J]. Bioch Society Transact, 2013, 41(4):1002-1007. |
[14] | Brooks AJ, Dai W, O'Mara ML, et al. Mechanism of activation of protein kinase JAK2 by the growth hormone receptor[J]. Science, 2014, 344(6185):1249783. |
[15] | Agrawal S, Gollapudi S, Su H, et al. Leptin activates human B cells to secrete TNF-α, IL-6, and IL-10 via JAK2/STAT3 and p38MAPK/ERK1/2 signaling pathway[J]. J Clin Immunol, 2011, 31(3):472-478. |
[16] | Zhang F, Li C, Halfter H, et al. Delineating an oncostatin M-activated STAT3 signaling pathway that coordinates the expression of genes involved in cell cycle regulation and extracellular matrix deposition of MCF-7 cells[J]. Oncogene, 2003, 22(6):894-905. |
[17] | Dawson MA, Bannister AJ, Göttgens B, et al. JAK2 phosphorylates histone H3Y41 and excludes HP1α from chromatin[J]. Nature, 2009, 461(7265):819-822. |
[18] | Zamora L, Xandri M, Garcia O, et al. Association of JAK2 mutation status and cytogenetic abnormalities at diagnosis in myeloproliferative neoplasms and myelodysplastic/ myeloproliferative neoplasms[J]. Am J Clin Pathol, 2012, 137(4):677-678. |
[19] | Salmoiraghi S, Montalvo ML, D'Agostini E, et al. Mutations and chromosomal rearrangements of JAK2:not only a myeloid issue[J]. Expert Rev Hematol, 2013, 6(4):429-439. |
[20] | Etheridge SL, Cosgrove ME, Sangkhae V, et al. A novel activating, germline JAK2 mutation, JAK2R564Q, causes familial essential thrombocytosis[J]. Blood, 2014, 123(7):1059-1068. |
[21] | Rampal R, Mascarenhas J. Pathogenesis and management of acute myeloid leukemia that has evolved from a myeloproliferative neoplasm[J]. Current Opin Hematol, 2014, 21(2):65-71. |
[22] | Cancer Genome Atlas Research Network. Genomic and epigenomic Landscapes of adult de novo acute myeloid leukemia[J]. NEJM, 2013, 368(22):2059-2074. |
[23] | Zhang SJ, Rampal R, Manshouri T, et al. Genetic analysis of patients with leukemic transformation of myeloproliferative neoplasms shows recurrent SRSF2 mutations that are associated with adverse outcome[J]. Blood, 2012, 119(19):4480-4485. |
[24] | Wang M, He N, Tian T, et al. Mutation analysis of JAK2V617F, FLT3-ITD, NPM1, and DNMT3A in Chinese patients with myeloproliferative neoplasms[J]. Biomed Res Int, 2014, 2014:485645. |
[25] | Nielsen C, Bojesen SE, Nordestgaard BG, et al. JAK2V617F somatic mutation in the general population:myeloproliferative neoplasm development and progression rate[J]. Haematologica, 2014, 99(9):1448-1455. |
[26] | Abdel-Wahab O, Manshouri T, Patel J, et al. Genetic analysis of transforming events that convert chronic myeloproliferative neoplasms to leukemias[J]. Cancer Res, 2010, 70(2):447-452. |
[27] | Lee JW, Kim YG, Soung YH, et al. The JAK2 V617F mutation in de novo acute myelogenous leukemias[J]. Oncogene, 2006, 25(9):1434-1436. |
[28] | Rampal R, Ahn J, Abdel-Wahab O, et al. Genomic and functional analysis of leukemic transformation of myeloproliferative neoplasms[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(50):E5401-E5410. |
[29] | Beer PA, Delhommeau F, LeCouedic JP, et al. Two routes to leukemic transformation after a JAK2 mutation-positive myeloproliferative neoplasm[J]. Blood, 2010, 115(14):2891-2900. |
[30] | Swaminathan S, Madkaikar M, Ghosh K, et al. Novel immunophenotypic and morphologic presentation in acute myeloid leukemia (AML) with[J]. Europ J Haematol, 2010, 84(2):180-182. |
[31] | Ikezoe T, Kojima S, Furihata M, et al. Expression of p-JAK2 predicts clinical outcome and is a potential molecular target of acute myelogenous leukemia[J]. Int J Cancer, 2011, 129(10):2512-2521. |
[32] | Kratz CP, Böll S, Kontny U, et al. Mutational screen reveals a novel JAK2 mutation, L611S, in a child with acute lymphoblastic leukemia[J]. Leukemia, 2005, 20(2):381-383. |
[33] | Funakoshi-Tago M, Tago K, Sumi K, et al. The Acute Lymphoblastic Leukemia-associated JAK2 L611S Mutant Induces Tumorigenesis in Nude Mice[J]. J Biol Chem, 2009, 284(19):12680-12690. |
[34] | Li F, Guo HY, Wang M, et al. The effects of R683S (G) genetic mutations on the JAK2 activity, structure and stability[J]. Int J Biol Macromol, 2013, 60:186-195. |
[35] | Wu QY, Guo HY, Li F, et al. Disruption of E627 and R683 interaction is responsible for B-cell acute lymphoblastic leukemia caused by JAK2 R683G(S) mutations[J]. Leuk Lymphoma, 2013, 54(12):2693-2700. |
[36] | Mullighan CG, Zhang J, Harvey RC, et al. JAK mutations in high-risk childhood acute lymphoblastic leukemia[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106(23):9414-9418. |
[37] | Chen IM, Harvey RC, Mullighan CG, et al. Outcome modeling with CRLF2, IKZF1, JAK, and minimal residual disease in pediatric acute lymphoblastic leukemia:a Children's Oncology Group study[J]. Blood, 2012, 119(15):3512-3522. |
[38] | Buitenkamp TD, Pieters R, Gallimore NE, et al. Outcome in children with Down's syndrome and acute lymphoblastic leukemia:role of IKZF1 deletions and CRLF2 aberrations[J]. Leukemia, 2012, 26(10):2204-2211. |
[39] | Haan C, Behrmann I, Haan S. Perspectives for the use of structural information and chemical genetics to develop inhibitors of Janus kinases[J]. J Cell Mol Med, 2010, 14(3):504-527. |
[40] | Zhong Y, Wu J, Ma R, et al. Association of Janus kinase 2 (JAK2) polymorphisms with acute leukemia susceptibility[J]. Int J Lab Hematol, 2012, 34(3):248-253. |
[41] | Nahajevszky S, Andrikovics H, Batai A, et al. The prognostic impact of germline 46/1 haplotype of Janus kinase 2 in cytogenetically normal acute myeloid leukemia[J]. Haematologica, 2011, 96(11):1613-1618. |
[42] | Verstovsek S, Silver RT, Talpaz M, et al. A double-blind, placebo-controlled trial of ruxolitinib for myelofibrosis[J]. NEJM, 2012, 366(9):799-807. |
[43] | Levis M, Ravandi F, Wang ES, et al. Results from a randomized trial of salvage chemotherapy followed by lestaurtinib for patients with FLT3 mutant AML in first relapse[J]. Blood, 2011, 117(12):3294-3301. |
[44] | Pardanani A, Laborde RR, Lasho TL, et al. Safety and efficacy of CYT387, a JAK1 and JAK2 inhibitor, in myelofibrosis[J]. Leukemia, 2013, 27(6):1322-1327. |
[45] | Pardanani A, Gotlib JR, Jamieson C, et al. Safety and efficacy of TG101348, a sSelective JAK2 inhibitor, inmyelofibrosis[J]. J Clin Oncol, 2011, 29(7):789-796. |
[46] | Weisberg E, Liu Q, Nelson E, et al. Using combination therapy to override stromal-mediated chemoresistance in mutant FLT3-positive AML:synergism between FLT3 inhibitors, dasatinib/ multi-targeted inhibitors and JAK inhibitors[J]. Leukemia, 2012, 26(10):2233-2244. |
[47] | Hart S, Goh KC, Novotny-Diermayr V, et al. SB1518, a novel macrocyclic pyrimidine-based JAK2 inhibitor for the treatment of myeloid and lymphoid malignancies[J]. Leukemia, 2011, 25(11):1751-1759. |
[48] | Novotny-Diermayr V, Hart S, Goh KC, et al. The oral HDAC inhibitor pracinostat (SB939) is efficacious and synergistic with the JAK2 inhibitor pacritinib (SB1518) in preclinical models of AML[J]. Blood Cancer J, 2012, 2(5):e69. |
[49] | Verstovsek S, Silver RT, Talpaz M, et al. A double-blind, placebo-controlled trial of ruxolitinib for myelofibrosis[J]. NEJM, 2012, 366(9):799-807. |
[50] | Barosi G, Zhang MJ, Peter GR. Does ruxolitinib improve survival of persons with MPN-associated myelofibrosis? Should it?[J]. Leukemia, 2014, 28(11):2267-2270. |
[51] | Kesarwani M, Huber E, Azam M. Overcoming AC220 resistance of FLT3-ITD by SAR302503[J]. Blood Cancer J, 2013, 3:e138. |
[52] | Verstovsek S, Tam CS, Wadleigh M, et al. Phase I evaluation of XL019, an oral, potent, and selective JAK2 inhibitor[J]. Leukemia Res, 2014, 38(3):316-322. |
[53] | Shide K, Kameda T, Markovtsov V, et al. R723, a selective JAK2 inhibitor, effectively treats JAK2V617F-induced murine myeloproliferative neoplasm[J]. Blood, 2011, 117(25):6866-6875. |
[54] | Cook AM, Li L, Ho Y, et al. Role of altered growth factor receptor-mediated JAK2 signaling in growth and maintenance of human acute myeloid leukemia stem cells[J]. Blood, 2014, 123(18):2826-2837. |
[55] | Abdel-Aziz MM. Clinical significance of serum p53 and epidermal growth factor receptor in patients with acute leukemia[J]. Asian Pac J Cancer Prev, 2013, 14(7):4295-4299. |
[56] | DeAngelo DJ, Neuberg D, Amrein PC, et al. A phase II study of the EGFR inhibitor gefitinib in patients with acute myeloid leukemia[J]. Leuk Res, 2014, 38(4):430-434. |
[57] | Lainey E, Wolfromm A, Sukkurwala AQ, et al. EGFR inhibitors exacerbate differentiation and cell cycle arrest induced by retinoic acid and vitamin D[J]. Cell Cycle, 2014, 12(18):2978-2991. |